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菌群多樣性研究的前期準備之樣本采集

2020-06-01

研究菌群多樣性組成譜主要是以細菌/古菌 16S rRNA基因可變區、真菌 18S rRNA 基因可變區或真菌 ITS(Internal transcribed spacer)內轉錄間隔區等微生物特征序列(Signature sequence)為靶點,通過檢測序列的變異和數量,反映菌群中各類微生物物種的身份和豐度,從而快速解碼菌群物種分布特征,闡明樣本間多樣性和組成差異,進而發現差異相關物種。菌群的物種分布與所取得的樣本有很大的相關性,所以樣本的收集和處理環節對后續的結果至關重要,今天主要來聊下針對不同的樣本有什么樣不同的取樣策略。


取樣前要做哪些準備呢?

不同的樣本取樣時的準備會有差異,但是大部分都會涉及到如下:

1. 取樣用品準備:由于所取樣本不同,需要準備的取樣器材不同,包括但不局限于經過滅菌的采血管、鑷子、EP管、鏟子等。

2. 取樣前對樣本的處理:若是固體整塊的樣本,建議用無菌器材切取有代表性的部分;若是液體樣本,建議混勻后取樣;若是粉末樣本,建議邊取邊混等,確保樣本的均勻性。

3. 取樣前或取樣后:在盛有樣本的容器上做好標記,密封,適當溫度保存。


土壤污泥類樣本要怎么取樣?

1. 根據研究目的確定采樣范圍,去除表面浮土,挖取地下5~20cm的土層。

2. 去除可見雜質,土壤過2mm篩網,每個樣品從3個及以上采樣點采集并混合而成,每1~5g分為一份袋裝保存;或取200-500mg分裝到2ml滅菌EP管中,足夠滿足一次實驗需求,同時根據實驗要求做好備份;避免運輸過程中樣品出現散漏等異常情況,置于低溫保存。

3. 污泥樣品在取樣時,需直接混勻;沙土類微生物含量相對少,可以多備些樣本,每5~10g為一份,袋裝保存。


糞便類樣本要怎么取樣?

一、人類糞便

方法一:

1. 準備好便盆或糞便容器,洗手,帶上手套收集新鮮的糞便樣本,糞便樣本中盡量無尿液。

2. 用無菌牙簽或糞便取樣器截取樣品中段里部(糞便表層含有腸粘膜脫落細胞),外部容易污染,且接觸空氣后,部分細菌 DNA 開始降解。

3. 用滅菌離心管每管稱取約0.2g左右糞便樣本,每個樣本取多管備份。

4. 分裝好后,若當天提取DNA,可以先放4°C,長期存放需先迅速放入液氮中,之后立即放入-80°C保存。

方法二:(推薦)推薦使用等分析管技術

1. 將糞便直接排便到無菌容器中,如果有條件,可當場進行后續操作,如果沒條件可將樣本在低溫下運輸,收集后48小時運輸到實驗室操作。

2. 使用吸管在糞便中反復插入,直到用均勻的混合物和最小的氣穴填充吸管;若在糞便樣品太軟或水分太多而無法填充吸管的情況下,使用無菌1ml注射器。吸管或者注射器有刻度,每次能確保取樣量相同。

提示:取樣最好在生物安全柜中進行。

二、小鼠糞便

分別收取目的小鼠的糞便,立即進行收取,盡量不要暴露在空氣中太長時間,避免污染和降解。


水體怎么取樣?

1. 根據研究目的確定采樣深度和范圍。

2. 采集好的水樣需要通過濾膜進行過濾,可以根據水樣的渾濁程度選擇相應孔徑的濾膜(清亮水樣:可選擇小孔徑的濾膜,一般選0.22μm或0.45μm的濾膜,過濾水樣體積大 于10L;渾濁水樣:過濾前靜置分離懸浮顆粒,也可以用大孔徑的濾膜預過濾一遍,再用小孔徑的濾膜進行過濾)。

3. 根據實驗需要做好備份,同時將濾膜-80℃保存備用。


食品類樣本怎么取樣?

1. 小包裝類樣品盡可能取原包裝,直到實驗前不要開封,以防污染。

2. 固體類樣品最好在不同部位采樣,一起放入滅菌離心管或者其他無菌容器保存。

3. 液體類樣品,取樣前盡量搖動混勻,放入15ml滅菌離心管,不要超過體積的四分之三,防止曝管。


研究表面微生物的應該怎么取樣?

1. 對于形狀較小的物體,直接將其放入無菌的容器中,加入PBS進行沖洗,振蕩使微生物脫落到PBS中;取液體放入滅菌離心管,-80℃保存備用。

2. 對于大的物體建議采用無菌棉簽沾取無菌水擦拭物體表面取樣,擦拭時在表面緩慢旋轉涂抹擦拭幾次,建議多擦拭幾個拭子;或用無菌手術刀片輕輕刮取物體表面取樣,將棉簽或刮取物放入滅菌離心管,-80℃保存備用。


研究植物內生菌應該怎么取樣?

1. 用流水沖洗植物根樣本表面并摘掉小側根,粘根土壤顆粒等以后對樣本進行化學消毒(95%的次氯酸鈉最少2min)。

2. 把樣本放入含有無菌玻璃珠的無菌水中劇烈搖晃,物理去除表面細菌。

3. 取出樣本后用手術刀片劃開根部表面,切取內部組織。

4. 把切取后的組織放入含有無菌玻璃珠的9%的生理鹽水中振蕩,在30℃的條件下振蕩4h以分離內生菌。

5. 用5μm濾膜過濾,15000rpm,4℃離心收集沉淀,長期存放需先迅速放入  液氮中,之后立即放入-80°C保存。


血液樣本怎么取樣?

1. 采集新鮮血液于含有EDTA的抗凝管中;顛倒數次混勻血液和EDTA。

2. 常溫3000rpm離心15min,棄上層血漿。

3. 下層血細胞分裝到EP管內,并標記好樣品名稱和日期保存在-20℃冰箱。


環境樣本怎么取樣?

1.自然沉降法:利用空氣微生物顆粒的重力作用,在一定時間內,讓所處區域的微生物顆粒逐步沉降到收集器皿(不推薦)。

2.使用各類抽氣裝置,針對實驗目的空氣微顆粒,用不同孔徑大小的無菌濾膜篩選目的顆粒,多次收集備用;將含顆粒過濾膜裝入無菌鋁箔內,密封在-80℃長期保存。


口腔樣本怎么取樣?

一、唾液樣本

1. 取樣前30分鐘,無進食、吸煙等動作。

2. 采樣之前要用雙手按摩臉頰兩側,盡可能的用舌頭多刮幾次上下顎,同時也可以用牙齒稍微的刮一下舌頭,保證脫落細胞的數量,使唾液流入唾液采集管中。


二、口腔內組織樣本

1. 口腔內組織的取樣建議用樣本采集拭子,確保在所要取樣部分反復擦拭最少10秒。

2. 采集后的拭子放入無菌管低溫保存。


呼吸道樣本怎么取樣?

一、上呼吸道

建議鼻拭子或者咽拭子,放保存液中保存。

二、下呼吸道

推薦支氣管鏡取樣:內窺鏡伸到氣道中的“楔子”,徐徐滴入生理鹽水,再抽吸出來并捕獲。保存在滅菌離心管-80℃備用。

三、痰液

盡量少帶唾液,獲得痰液后可以加入二硫蘇糖醇來稀釋樣本。


腸道內容物怎么取樣?

1. 在實驗對象死亡后,用無菌解剖刀,在無菌狀態下取出整個腸道,切取所需腸段的內容物(條件允許的話,可在無菌操作臺進行)。

2. 用無菌手術刀挖取內容物,立即放在冰上進行分裝并標記。

3. 用滅菌離心管分裝,單個樣本取樣量:0.2-0.5g/管。為保證實驗順利進行,每個樣本取多管備份,在采樣允許的情況下,盡量多采集樣品。


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